微生物实验室用玻璃器皿的清洗与灭菌标准操作规程

SOP for Cleaning and Sterilization of Glassware Used in Microbiology Laboratory

2011年3月8日Ankur Choudhary (noreply@blogger.com)AI 专业翻译

1.0 目标

描述用于微生物实验室的玻璃器皿的清洗程序。

2.0 范围 

本标准操作规程(SOP)适用于微生物分析中使用的玻璃器皿的清洗工作。

3.0 责任

微生物学家 - 质量控制部门

4.0 责任制 

质量控制经理

5.0 程序

5.1 一般要求

请在烧瓶、移液器和歧管装置灭菌后的3天内使用它们。
5.2 用于量瓶、烧杯、锥形瓶、试管、支架、面糊搅拌瓶以及塞子瓶的容器。
5.2.1 将玻璃器皿中的溶液完全倒出,并用饮用水冲洗干净,以去除残留的溶液。使用长柄刷子,用2%的肥皂溶液或0.5%的Labolene清洗玻璃器皿的内外表面。
5.2.2 将肥皂溶液倒掉,然后用饮用水彻底清洗玻璃器皿,以去除残留物。 洗涤剂 彻底清洗后,再用……冲洗干净。 纯化水.
5.2.3 将玻璃器皿在60至65°C的烤箱中烘干。
5.2.4 用不吸水的棉塞塞住干燥烧瓶和试管的口部,然后用玻璃纸或蜡纸包裹起来。如有需要,可贴上指示标签。
5.2.5 将玻璃器皿在121°C、15磅的压力下进行高压灭菌,灭菌时间需符合已验证的周期要求。

5.3 移液器和滴定管

5.3.1 使用后立即将移液管/滴定管浸入新鲜配制的2%液体肥皂溶液或0.5% Labolene溶液中。
5.3.2 用流动的饮用水冲洗每个移液管/滴定管。
5.3.3 用流动的饮用水彻底冲洗,以清除所有残留的液体肥皂。
5.3.4 用纯化水冲洗移液管/滴定管。 蒸馏水 并在60至65°C的烤箱中干燥。
5.3.5 用不吸水的棉塞堵住干燥后的移液管/滴定管的管口。
5.3.6 用玻璃纸或牛皮纸包裹产品,如需要可贴上指示标签,然后放入高压灭菌器中,在121°C、15磅的压力下进行灭菌,具体时间需根据验证过的灭菌程序来确定。
5.3.7 在标签上标注产品生产日期。 灭菌 & 在...之前使用。

5.4 多路阀单元

5.4.1 拆卸装置,并用2%的肥皂溶液彻底清洗装置的垫圈、盖子以及内部和外部表面。
5.4.2 用饮用水和纯化水清洗该设备。
5.4.3 最后用蒸馏水冲洗设备,并将其放置晾干。
5.4.4 组装装置,并用赛洛芬(Cello fen)/黄油纸(Butter paper)进行包装;如需要,可贴上指示标签(indicator)。随后在121°C、15磅压力的条件下进行高压灭菌(autoclave),按照已验证的周期时间进行操作。
5.4.5 在标签上标注灭菌日期和“使用前”日期。

5.5 用于培养皿(Petri plates)

5.5.1 用钝刀将琼脂从培养皿中刮除。
5.5.2 将琼脂收集到不锈钢容器中。 在121°C下进行高压灭菌处理。15磅的压力持续30分钟。
5.5.3 应立即将培养基在指定地点焚烧处理,或将其排入指定的排水系统。 ETP.
5.5.4 将培养皿浸入装满...的洗涤槽中。 消毒液.
5.5.5 用自来水冲洗培养皿,然后将其浸入含有2%肥皂溶液或0.5% Labolene的洗涤槽中。
5.5.6 用刷子或清洗工具清洁每个培养皿。
5.5.7 用自来水彻底冲洗每个培养皿,然后用纯净水再次冲洗,以去除残留的肥皂。
5.5.8 最后用纯净水冲洗培养皿。将冲洗后的培养皿放在60至65°C的烤箱中干燥。
5.5.9 将5到10个培养皿装成一捆进行干燥处理,然后用玻璃纸或牛皮纸包裹。如有需要,可贴上指示标签。随后在121°C、15磅压力的条件下进行高压灭菌。 经过验证的工艺周期 时间。
5.5.10 在标签上标注灭菌日期和有效期(使用截止日期)。

5.6 注意事项

5.5.1 在处理使用过的培养皿、移液器和烧瓶时,必须佩戴一次性乳胶橡胶手套。
5.5.2 所有受污染的玻璃器皿都应使用经过验证的灭菌程序,在121°C下进行灭菌处理。
5.7 使用玻璃器皿后的清洁频率:每次使用后均需进行清洁。

6.0 缩写词

6.1 标准操作规程(Standard Operating Procedure)


📌 本文由 AI 翻译自 pharmaguideline.com,仅供内部参考查看英文原文